Conseils d'utilisation Un marquage vert caractérise, sur l'une des extrémités de la bandelette en papier, la surface de réaction imprégnée de réactif de détection. Les colonies à contrôler, sont à étaler sur la surface de réaction. L'apparition, en l'espace de 15 secondes, d'une coloration bleue foncée/violette, indique la présence de bactéries oxydase positives. Les bactéries suivantes sont typiquement des bactéries oxydase positives: Helicobacter pylori, Vibrio cholerae, Campylobacter jejuni, Legionella pneumophila, Neisseria, Moraxella, beaucoup de Pseudomonas et diplocoques. Les entérocoques sont typiquement oxydase négatives. Test à l oxidase . Dans le panier ROTITEST ® bandelettes oxydase Quantité sélectionnée: 0 Somme intermédiaire: 0. 00 Cdt. Emb. Prix Quantité 100 pcs tube 41, 85 € En cours d'approvisionnement Non disponible Date de livraison inconnue à l'heure actuelle Téléchargements / FDS Certificats d'analyse Spécification Couleur du papier blanc Marquage de la surface de réaction vert Virage de la couleur vers le bleu conforme Virage de la couleur, germes de contrôle conforme
une réaction positive est indiquée par une teinte pourpre foncé intense, apparaissant en 5 à 10 Secondes, une réaction « positive retardée" par coloration en 10 à 60 secondes et une réaction négative par absence de coloration ou par coloration postérieure à 60 secondes. méthode du papier filtre humide Une bande de papier filtre est imbibée d'un peu de solution fraîchement préparée à 1% du réactif. Un grain de culture est frotté dessus avec une boucle de platine., méthode sur plaque directe ajouter 2 à 3 gouttes de réactif directement aux colonies suspectes sur une plaque de gélose. Ne pas inonder la plaque avec le réactif. ROTITEST®bandelettes oxydase | Détection de cytochrome oxydase | Réactifs de test | Identification des microorganismes | Microbiologie | Life Science | Carl Roth - France. Observez le changement de couleur dans les 10 Secondes. Remarque: la méthode de la plaque directe doit être effectuée sur une plaque de gélose non sélective., lors de l'utilisation du réactif oxydase de Kovac, les microorganismes sont oxydases positives lorsque la couleur passe au violet foncé dans les 5 à 10 Secondes. Les microorganismes sont retardés oxydase positive lorsque la couleur passe au violet dans les 60 à 90 secondes.
Les bactéries et les levures cultivées sur des milieux contenant de fortes concentrations de glucose montrent une activité oxydase inhibée, il est donc recommandé de tester les colonies cultivées sur des milieux sans excès de sucre, telles que la gélose nutritive., La gélose de soja tryptique est également un excellent milieu. les Bactéries cultivées sur des milieux contenant des colorants peuvent donner des résultats aberrants. Les réactifs d'essai tueront efficacement les micro-organismes, de sorte que la sous-culture doit être effectuée avant d'ajouter un réactif à une culture active. Oxydase : définition et explications. Le test d'oxydase peut être utilisé dans l'identification présumée de Neisseria et dans la différenciation et l'identification des bacilles à gram négatif. Les organismes à oxydase positive doivent être examinés par coloration de gram pour déterminer la morphologie et la réaction de gram., Des tests biochimiques supplémentaires sont recommandés pour une identification complète. L'utilisation d'un nichrome ou d'une autre boucle contenant du fer peut entraîner des réactions faussement positives.
Consommé à fortes doses (plus de 2 g/jour), l'acide ascorbique peut interférer avec les tests biologiques suivants: dosages de la créatinine et du glucose, sanguins et urinaires (contrôle du diabète par tigette à la glucose-oxydase). Associations déconseillées Liée à la présence de sorbitol: + Kayexalate (voies orales et rectales): Risque de nécrose colique, éventuellement fatale. La glucose-oxydase : résultats EXAO - SVT Lyon. A doses supérieures à 1 g/jour en vitamine C, possibilité de: troubles digestifs (brûlures gastriques, diarrhée), troubles urinaires (lithiases oxaliques, cystiniques et/ou uriques). A doses supérieures à 2 g/jour en vitamine C, l'acide ascorbique peut interférer avec les tests biologiques suivants: dosage de la créatinine et du glucose sanguins et urinaires (contrôles du diabète par tigette à la glucose oxydase). A dose supérieures à 3 g/jour en vitamine C, risque d'hémolyse chez les sujets déficients en G6PD. Durée de conservation: 3 ans Précautions particulières de conservation: Pas de précautions particulières de conservation.
Nos souches n'ont données aucune couleur sur le disque, donc sont Oxydase –[Fig. 31]
Il est également utilisé pour différencier les pseudomonades des espèces apparentées. Procédure du Test D'oxydase Il existe de nombreuses variantes de méthode au test d'oxydase. Ceux-ci incluent, mais ne sont pas limités à, l'essai de papier filtre, la méthode directe de plat, la méthode d'écouvillon, la méthode imprégnée de bande d'essai d'oxydase et la méthode de tube à essai. Tous les temps et concentrations sont basés sur les recommandations originales., à Sec Méthode du Papier Filtre Depuis le oxydase réactif est instable et doit être fraîchement préparé pour l'utilisation, cette méthode est pratique. Une bande de papier filtre Whatman's no. 1 est trempée dans une solution à 1% de dichlorhydrate de tertraméthyl-p-phénylène-diamine fraîchement préparée. après avoir vidangé pendant environ 30 secondes, les bandes sont lyophilisées et stockées dans une bouteille sombre hermétiquement fermée avec un bouchon à vis. pour l'utilisation, une bande est retirée, déposée dans une boîte de Pétri et humidifiée avec de l'eau distillée., La Colonie à tester est ramassée avec une boucle de platine et étalée sur la zone humide.
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